ESMO中国之声丨王永胜教授:从动态疗效分层到多组学解析,探索HR+/HER2−乳腺癌精准“加减法”
发布时间:2026-11-04   
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 编者按


随着CDK4/6抑制剂在HR+/HER2−早期乳腺癌中的应用不断拓展,临床关注的重点已从“是否需要强化治疗”,进一步转向“哪些患者真正需要强化,以及哪些患者最可能从中获益”。


目前,辅助治疗决策主要依据肿瘤大小、淋巴结状态、组织学分级及Ki-67等基线临床病理特征,但这些静态指标尚难以完整反映肿瘤对治疗的真实生物学敏感性。


从机制上看,芳香化酶抑制剂主要减少上游雌激素依赖性生长信号,CDK4/6抑制剂则进一步阻断RB磷酸化及G1/S期转换。对于单纯内分泌治疗不能充分抑制肿瘤增殖的患者,“ER信号抑制+细胞周期阻断”的双通路干预有望产生更深的抗增殖效应。但双通路阻断并不意味着无差别强化,如何通过治疗早期反应筛选真正需要联合治疗的患者,正是精准治疗的关键。


在ESMO 2026大会上,山东省肿瘤医院王永胜教授团队报告了一项前瞻性、多中心研究。该研究将短程新辅助内分泌治疗作为“体内药敏试验”,以Ki-67动态变化指导患者分层,并结合单细胞转录组、整体转录组及二代测序,探索CDK4/6抑制剂敏感与非反应的潜在机制,为HR+/HER2−乳腺癌从“静态风险分层”走向“动态反应分层”提供了新思路。


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壁报:580P



 研究简介


一、研究背景与目的



CDK4/6i强化辅助治疗带来的iDFS绝对改善约为4.9%–7.6%。考虑到治疗相关不良事件及经济负担,精准识别最可能从CDK4/6i中获益的患者,有助于减少治疗不足或过度治疗。短程适应性NET可能有助于筛选可从强化治疗中获益的患者。本研究旨在利用适应性NET指导内分泌治疗联合CDK4/6i的患者筛选,并探索CDK4/6i非反应的潜在分子机制。


二、研究方法



本研究为前瞻性、多中心临床试验(NCT05809024),纳入绝经后、II–III期、HR+/HER2−且基线Ki-67 >10%的乳腺癌患者。所有患者先接受2周AI新辅助内分泌治疗,随后进行第二次肿瘤活检,并依据治疗后Ki-67水平(cut-ooff值10%)分层:


  • AI反应组:Ki-67≤10%,直接接受手术。

  • AI非反应组:Ki-67>10%,术前继续接受1个周期AI联合CDK4/6i(达尔西利)治疗。


研究在NET前、AI治疗后及AI + CDK4/6i治疗后采集肿瘤样本,开展单细胞转录组测序、bulk transcriptomic sequencing及NGS分析。


三、研究结果



1. Ki-67动态反应与安全性


2023年2月至2026年期间,共纳入131例患者。经过2周AI治疗后,88例(67.2%)患者Ki-67降至≤10%,归入AI反应组;43例(32.8%)患者Ki-67仍>10%,归入AI非反应组。

在43例AI非反应患者中,加入CDK4/6抑制剂治疗1个周期后,25例(58.1%)患者Ki-67降至≤10%,归入CDK4/6抑制剂反应组;18例(41.9%)患者Ki-67仍>10%,归入CDK4/6抑制剂非反应组。研究未观察到新的药物相关不良事件。


2. 单细胞及整体转录组分析


单细胞测序共纳入23例患者,包括AI反应7例、AI非反应12例、CDK4/6抑制剂反应2例及CDK4/6抑制剂非反应2例。研究识别出7类主要细胞群:B细胞、CD8+ T细胞、内皮细胞、上皮细胞、成纤维细胞、巨噬细胞和肥大细胞。


AI非反应组中肥大细胞显著增多,恶性上皮C2细胞簇在CDK4/6抑制剂非反应组中明显富集。研究进一步提出:基线ER-high/Prolif-low/CDK2-bypass-low的R型肿瘤更偏向内分泌驱动,对CDK4/6抑制剂敏感;CDK2-bypass-high/Prolif-high的NR型肿瘤则相对不敏感。在敏感组中,CDK4/6抑制剂治疗显著上调肿瘤细胞的抗原加工及MHC-I相关分子通路。


对52份肿瘤样本进行整体转录组测序发现,FUT6、APOF和SERPINA6在CDK4/6抑制剂非反应组中表达上调,其中FUT6差异最显著,提示FUT6可能成为预测CDK4/6抑制剂非反应的候选生物标志物。


3. NGS及耐药通路分析


NGS共纳入61例患者。PIK3CA突变率在AI治疗前为54.5%,AI治疗后为60.6%;AI治疗后,AI非反应组与反应组分别为72.7%和53.8%。AI联合CDK4/6抑制剂治疗后,总体PIK3CA突变率为42.8%,其中CDK4/6抑制剂非反应组和反应组分别为62.5%和16.6%。


TP53突变率在AI治疗前为36.3%,AI治疗后为42.6%,AI联合CDK4/6抑制剂治疗后为57.1%;联合治疗后,CDK4/6抑制剂非反应组和反应组分别为75.0%和33.3%。


突变景观分析显示,ESR1在AI耐药中富集,RB1在CDK4/6抑制剂耐药中富集;PI3K通路相关改变(PIK3CA/AKT1/PTEN)贯穿多个治疗阶段。PIK3CA在CDK4/6抑制剂非反应人群中持续保持较高频率,提示PI3K/AKT信号可能构成长期维持肿瘤细胞生存的旁路。CDK4/6抑制剂非反应人群中,RB/E2F、PI3K/AKT、ER/ESR1及DNA损伤相关通路异常比例更高。


四、研究结论



在初始AI非反应患者中,加用CDK4/6i(达尔西利)后Ki-67显著降低,提示该人群可能从基于CDK4/6i的强化治疗中获益。


恶性上皮C2细胞簇与FUT6被识别为与CDK4/6i非反应相关的潜在治疗靶点;在AI + CDK4/6i治疗后,PIK3CA和TP53突变在CDK4/6i非反应组中仍保持较高比例。



 研究者说



01 从静态风险到动态反应:为什么以Ki-67变化指导治疗分层?



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目前,CDK4/6抑制剂已成为部分高风险HR+/HER2−早期乳腺癌患者的重要治疗选择。您和团队为什么选择短程新辅助内分泌治疗及Ki-67动态变化作为研究切入点?


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王永胜 教授

山东省肿瘤医院

对于高风险HR+/HER2−早期乳腺癌,在标准内分泌治疗基础上联合CDK4/6抑制剂,可以进一步强化疾病控制。但临床需要回答的不只是“能否加用”,更重要的是“哪些患者真正需要,以及哪些患者最可能获益”。


传统治疗决策主要依赖治疗前的临床病理特征,属于静态风险评估,不能完全反映肿瘤在药物压力下的实际反应。因此,我们将短程新辅助内分泌治疗作为一种“体内药敏试验”,通过Ki-67的早期变化判断肿瘤对内分泌治疗的敏感性。


如果Ki-67迅速降至10%或以下,说明单纯ER通路抑制已经产生明显的抗增殖效应;如果Ki-67仍高于10%,则提示仅抑制ER信号可能不足,需要进一步阻断下游细胞周期。


AI抑制上游雌激素依赖性信号,CDK4/6抑制剂则阻断RB磷酸化及G1/S期转换。二者联合可以同时覆盖“生长信号输入”和“细胞周期执行”,形成ER信号与细胞周期的双通路阻断。


因此,本研究希望区分三类患者:单纯AI治疗已充分获益者;AI反应不足但可从CDK4/6抑制剂中获益者;以及双通路阻断后仍然不敏感者。核心逻辑是先观察反应,再决定是否强化。


02 从单通路到双通路阻断:超过半数AI非反应患者获得进一步增殖抑制



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对于初始AI治疗反应不足的患者,加用CDK4/6抑制剂后带来了怎样的变化?


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王永胜 教授

山东省肿瘤医院

本次更新共纳入131例患者。经过2周AI治疗后,约三分之二患者的Ki-67降至10%或以下;另外32.8%的患者Ki-67仍高于10%。在这部分AI非反应患者中,加入CDK4/6抑制剂后,58.1%的患者Ki-67进一步降至10%或以下。


该结果表明,在初始AI非反应患者中,部分患者在加用CDK4/6i后可获得进一步的Ki-67抑制。


按照研究预设的动态分层,AI非反应患者可进一步分为CDK4/6i-responsive与CDK4/6i-nonresponsive两类。


需要强调的是,本研究报告的是短期Ki-67变化;poster 未报告长期复发或生存结局,因此不应将该结果直接解读为远期临床获益。


03 从细胞亚群到基因组改变:多组学揭示了哪些潜在非反应机制?



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该研究整合了单细胞转录组、整体转录组及NGS分析。多组学结果为理解AI及CDK4/6抑制剂非反应提供了哪些值得关注的线索?


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王永胜 教授

山东省肿瘤医院

本研究在不同治疗阶段进行动态组织取样,希望回答为什么部分患者对AI敏感,部分患者需要联合CDK4/6抑制剂,以及为什么仍有患者在双通路阻断后保持较高增殖活性。


单细胞测序共纳入23例患者,识别出B细胞、CD8+ T细胞、内皮细胞、上皮细胞、成纤维细胞、巨噬细胞及肥大细胞等7类主要细胞群。AI非反应组中肥大细胞丰度较高,而恶性上皮C2细胞簇在CDK4/6抑制剂非反应组中明显富集。


这提示,治疗非反应可能不仅与单个基因改变有关,还可能涉及特定恶性细胞亚群在治疗压力下的选择和富集。


对52份肿瘤样本进行的整体转录组分析显示,FUT6、APOF和SERPINA6在CDK4/6抑制剂非反应组中表达上调,其中FUT6差异最为显著。FUT6可能是值得进一步研究的候选生物标志物,但其预测价值和功能机制尚需通过扩大样本、独立队列及功能实验进一步验证。


本研究对61例患者进行了NGS分析。结果显示,PIK3CA和TP53是队列中较为常见的基因改变,并在不同治疗阶段及不同反应人群中呈现一定差异。

AI联合CDK4/6抑制剂治疗后,CDK4/6抑制剂非反应组与反应组的PIK3CA突变率分别为62.5%和16.6%,TP53突变率分别为75.0%和33.3%。通路分析还提示,RB/E2F、PI3K/AKT、ER/ESR1及DNA损伤相关通路可能与治疗非反应有关。


这些结果提示,即使ER信号和CDK4/6–RB细胞周期轴受到抑制,部分肿瘤仍可能通过旁路生存信号、细胞周期调控异常或基因组不稳定性维持增殖。


CDK4/6抑制剂非反应可能并非由单一分子事件驱动,而是多层次、多通路共同作用的结果。目前这些发现尚不能直接转化为具体治疗方案,但为后续分层和联合治疗研究提供了方向。


04 从“谁是高风险”走向“谁真正需要强化”



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综合临床表型和多组学结果,这项研究对未来HR+/HER2−早期乳腺癌精准治疗有哪些启示?


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王永胜 教授

山东省肿瘤医院

这项研究的价值不仅在于发现候选标志物,更重要的是探索了一种从静态风险分层走向动态药物反应分层的路径。


精准治疗并不意味着一味增加治疗,而是根据肿瘤的真实反应决定何时做减法、何时做加法。


对于短程AI治疗后Ki-67迅速下降的患者,单纯ER通路抑制可能已经产生充分的早期抗增殖作用,未来可以研究其是否存在避免过度强化的空间。


对于AI治疗后Ki-67仍较高、但加入CDK4/6抑制剂后明显下降的患者,从单一ER通路抑制升级为“ER信号+细胞周期”的双通路阻断,是获得更深抗增殖效应的重要步骤。


对于双通路阻断后Ki-67仍然较高的患者,则需要进一步分析PI3K/AKT、RB/E2F、ER/ESR1、DNA损伤相关改变及其他旁路机制。


未来理想的治疗路径,应当是一个动态适应性过程。


短程AI初筛内分泌敏感性 → 联合CDK4/6抑制剂识别双通路阻断获益人群 → 多组学解析双通路阻断后仍然非反应的人群



上述单细胞转录组、bulk transcriptomic sequencing及NGS结果均为探索性发现,尚需前瞻性验证。


因此,本研究支持将适应性NET作为早期生物学分层策略进行进一步研究,但现有结果尚不足以直接改变临床治疗选择。



 总结与展望


王永胜教授团队开展的这项前瞻性、多中心研究,以短程新辅助内分泌治疗为生物学窗口,将Ki-67动态变化、多阶段组织取样与多组学分析相结合,构建了从内分泌敏感性判断、CDK4/6抑制剂获益识别到潜在非反应机制探索的研究链条。


研究显示,约三分之二患者经短程AI治疗后Ki-67降至10%或以下;在AI非反应患者中,加入CDK4/6抑制剂后,58.1%的患者获得进一步增殖抑制。该结果支持在单纯ER通路抑制不足的患者中,通过“ER信号+细胞周期”双通路干预实现更深的生物学效应。


这项研究的核心并不是笼统比较联合治疗与单药治疗,而是回答三个更具精准治疗价值的问题:


1. 哪些患者通过单纯ER通路抑制即可获得充分反应?

2. 哪些患者需要升级为ER信号与细胞周期双通路阻断?

3. 哪些患者在双通路阻断后仍然不敏感,需要新的治疗组合?


从静态风险判断走向动态药物反应,从单通路抑制走向有选择的双通路阻断,再到多组学指导的耐药干预,有望成为HR+/HER2−早期乳腺癌精准强化治疗的重要方向。


本研究目前观察的主要是短期Ki-67抗增殖反应,多组学结果亦处于探索阶段。未来仍需结合长期随访、外部验证及功能研究,进一步明确其临床转化价值。



专家简介

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王永胜  教授

  • 终身教授  人民名医

  • 山东省肿瘤医院 乳腺肿瘤学科主任

  • 乳腺外科国家临床重点专科建设项目 带头人

  • 中国抗癌协会乳腺癌专委会 常委 第八/九届副主委

  • 中国抗癌协会国际医疗交流分会 副主委

  • 中国临床肿瘤学会 理事 乳腺癌专家委员会常委

  • 国家卫健委乳腺癌诊疗规范专家组 成员

  • 国家癌症中心乳腺癌质控专委会 委员

  • 山东省医学会肿瘤学分会 副主委 乳腺肿瘤学组组长



供稿:王永胜教授

排版:Ocean

执行:Ocean






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